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#7 - Dynamique Microbienne et Transmission Virale
membres :
| Mavingui Patrick | - | Chargé de Recherche, CR |
| Potier Patrick | - | Professeur, PR |
| Kodjo Angeli | - | Professeur, PR |
| Tran Van Van | - | Ingénieur d’etude, IE |
| Roche Joelle | - | CDD |
| Voronin Denis | - | Postdoc |
| Zouache Karima | - | Doctorant |
| Raharimalala Fara Nantenaina | - | Doctorant |
| Gautier Amelie | - | MASTER |
| Arias Goeta Camilo | - | MASTER |
| Boyer Marie-Christelle | - | MASTER |
| Raquin Vincent | - | MASTER |
presentation :
Les maladies infectieuses connaissent une recrudescence par l’émergence de pathogènes jusqu’alors inconnus et la réapparition de pathologies que l’on croyait sous contrôle. Les mesures de prophylaxie sanitaire permettant de lutter contre les agents étiologiques, en particulier viraux, responsables d’épidémie et d’épizootie ont montré leur limite pour empêcher la dissémination dans les zones endémiques et d’épidémie récente, en partie due aux résistances aussi bien des germes que des vecteurs vis-à-vis des biocides. La résurgence des maladies infectieuses soulève des questions de la persistance et de la prévalence de pathogènes dans les dépositoires et réservoirs naturels (sols, eaux, végétaux, animaux) et des conditions d’émergence qui restent mal connues en général, et qu’il est nécessaire d’aborder pour élaborer des stratégies de lutte adaptées et efficaces. C’est dans cette perspective que l’équipe émergente se propose de réaliser des recherches sur la dynamique des interactions multipartites entre les virus émergents, les communautés microbiennes, et les réservoirs dans les milieux naturels et anthropisés. L’approche systémique qui sera menée doit aboutir à une vision plus complète des acteurs et phénomènes associés dans la circulation virale, et à terme de mettre en place des plans de surveillance, d’alerte et de contrôle dans la lutte contre les vecteurs et viroses qui affectent la santé de l’homme et des animaux. Nos deux axes majeurs de recherches sont centrés autour de l’écologie des virus (ré)-émergents (chikungunya, dengue, influenza) en relation avec les activités microbiennes dans les réservoirs/vecteurs et les facteurs environnementaux potentiellement impliqués dans les évolutions épidémiologiques des maladies infectieuses virales.
axes de recherche :
Axe 1 - Persistance et prévalence des virus influenza et maintien du pouvoir infectieux dans l’environnement.
Les travaux et données récents indiquent que les oiseaux sauvages sont des réservoirs naturels des virus influenza. On peut aussi envisager que les zones de résidence de ces animaux génèrent des réservoirs « secondaires » tant au niveau du sol que des sédiments ou encore des animaux aquatiques dont ils se nourrissent. Cet axe est dédié à l’évaluation du rôle du compartiment sol comme « dépositoire ou réservoir » potentiel des virus influenza A aviaires en prenant en compte les facteurs biotiques et abiotiques d’émergence qui ont été négligés jusqu’à présent. Il s’agit (1) de rechercher le virus influenza H5N1 hautement pathogène dans les sols et étangs de résidence ou de migration des oiseaux ansériformes réservoirs primaires dans les régions d’émergence (Thaïlande, France), (2) d’évaluer l‘existence ou non de réservoirs biotiques secondaires (gastéropodes, bivalves, larves d’insectes) des virus, (3) d’utiliser des modèles faiblement pathogènes (IAHP A H5N2) ou des mutants non réplicatifs (IAHP A H5N1) pour analyser in vitro les conditions de persistance du virus avec prise en compte des interactions virus-sol-matière organique, (4) d’évaluer les propriétés virucidales ou protectrices des microorganismes indigènes du sol.
Axe 2 - Interactions cellulaires et moléculaires entre arbovirus, communautés microbiennes et vecteurs.
Ces dernières années des épidémies à arboviroses sévissent tant dans les régions endémiques des vecteurs que dans les régions géographiques nouvelles. Face à l’ampleur des épidémies et à l’absence de vaccin, les risques écologiques de l’utilisation massive des insecticides sont largement ignorés, et les vecteurs développent de plus en plus des résistances vis-à-vis des produits utilisés. Dans ce contexte, en complément des agents chimiques et génétiques, l’exploitation comme biopesticides des communautés microbiennes, comme les bactéries du genre Wolbachia, capables d’affecter la reproduction et le développement des arthropodes est une stratégie qui est mise en avant pour la lutte anti-vectorielle. Cet axe vise à déterminer l’impact des interactions entre les arbovirus (Chikungunya, Dengue), les communautés microbiennes et les moustiques vecteurs, en particulier Aedes albopictus et Aedes aegypti, sur la transmission virale. Il s’agit (1) d’analyser la prévalence des populations virales et des communautés microbiennes symbiotiques et parasites chez les vecteurs dans les zones d’endémie et d’émergence, (2) de caractériser les interactions cellulaires et moléculaires possibles entre les virus et les communautés microbiennes in cellula et in insecta, (3) d’évaluer l’influence du compartiment microbien sur la dynamique vectorielle et la circulation virale.
publications 2003-2006 (Mise à jour Juin 2006) :
Rapp D., Potier P., Jocteur-Monrozier L., Richaume A. 2006. Prion degradation in soil : possible role of microbial enzymes stimulated by the decomposition of buried carcasses. Environ. Sci. Technol. 40:6324-6329.
Vial L., Lavire C., Mavingui P., Blaha D., Haurat J., Moënne-Loccoz Y., Bally R., Wisniewski-Dyé F. 2006. Phase variation and Genomic architecture changes in Azospirillum . J. Bacteriol. 188 :5364-5373.
Hernandez-Lucas I., Ramirez-Trujillo J.A., Gaitan M.A., Guo X., Flores M., Martinez-Romero E., Perez-Rueda E., Mavingui P. 2006. Isolation and characterization of functional insertion sequences of rhizobia. FEMS Microbiol. Lett. 261:25-31.
Cérémonie H., Boubakri H., Mavingui P., Simonet P., Vogel T.M.. 2006. Plasmid-encoded g -hexachlorocyclohexane degradation genes and insertion sequences in Sphingobium francense (ex- Sphingomonas paucimobilis SP+). FEMS Microbiol. Lett. 257 :243-252.
Mavingui P., Tran Van V., Labeyrie E., Rancès E., Vavre F., Simonet P. 2005. Efficient procedure for purification of obligate intracellular Wolbachia pipientis and representative amplification of its genome by multiple-displacement amplification. Appl. Environ. Microbiol. 71:6910-6917.
Reis V. M., Estrada-de los Santos P., Tenorio-Salgado S., Vogel J., Stoffels M., Guyon S., Mavingui P., Baldani V.L.D., Schmid M., Baldani J.I., Döbereiner J., Balandreau J., Hartmann A., Caballero-Mellado J. 2004. Burkholderia tropica sp nov. : a new nitrogen-fixing, plant-associated bacterial species in the genus Burkholderia . International J. Sys. Evol. Microbiol. 54 :2155-2162.
Maron P.A., Richaume A., Potier P., Lata J.C., Lensi R. 2004. Immunological method for direct assessment of the functionality of a denitrifying strain of Pseudomonas fluorescens in soil. 2004. J. Microbiol. Methods 1 :13-21.
Guo X., Flores M., Mavingui P., Fuentes S.I., Hernandez G., Davila G., Palacios R.. 2003. Natural genomic design in Sinorhizobium meliloti : Novel genomic architecture. Genome Res. 13:1810-1817.
Mavingui P., M. Flores, X. Guo X., G. Davila, X. Perret, Broughton W.J, Palacios R. 2002. Dynamics of genome architecture in Rhizobium sp. strain NGR234. J. Bacteriol. 184:171-176.
Estrada P., Mavingui P., Cournoyer B., Fontaine F., Balandreau J., Caballero-Mellado J. 2002. A N2-fixing endophytic Burkholderia sp. Associated with maize plants cultivated in Mexico. Can. J. Microbiol. 48:285-294.
Hernandez-Lucas I., Mavingui P., Finan T., Chain P., Martinez-Romero E. 2002. In vivo Cloning strategy for Rhizobium plasmids. Biotechniques 33 (4):782,784,786-8.
Flores, M., Mavingui P., Perret X., Broughton W.J., Romero D., Hernández G., Dávila G., Palacios R. 2000. Prediction, identification, and artificial selection of DNA rearrangements in Rhizobium : Toward a natural genomic design. Proceeding National Academy Science USA 97:9138-9143.
Castillo M., Flores M., Mavingui P., Martínez-Romero E., Palacios R., G. Hernández 1999. Increase in alfalfa nodulation, nitrogen fixation and plant growth by a specific DNA amplification in Rhizobium meliloti . Applied and Environmental Microbiology . 65:2716-2722.
Mavingui P., Laeremans T., Flores M., Romero D., Martinez-Romero E., R. Palacios. 1998. Genes essential for Nod factor production and nodulation are located on a symbiotic Amplicon (AMPRtrCFN299pc60) in Rhizobium tropici . J. Bacteriol. 180:2866-2874.
Flores M., Mavingui P., Girard L., Perret X., Broughton W.J., Martínez-Romero E., Dávila G., Palacios R. 1998. Three replicons of Rhizobium sp. NGR234 harbour symbiotic gene sequences. J. Bacteriol. 180:6052-6053.
Mavingui P., Flores M., Romero D., Martinez-Romero E., Palacios R. 1997. Generation of Rhizobium strains with improved symbiotic properties by random DNA amplification (RDA). Nature Biotechnol.15:564-569.




